Tiêu chuẩn Quốc gia TCVN 8685-27:2018 Quy trình kiểm nghiệm vắc xin - Vắc xin nhược độc

  • Thuộc tính
  • Nội dung
  • Tiêu chuẩn liên quan
  • Lược đồ
  • Tải về
Mục lục Đặt mua toàn văn TCVN
Lưu
Theo dõi văn bản

Đây là tiện ích dành cho thành viên đăng ký phần mềm.

Quý khách vui lòng Đăng nhập tài khoản LuatVietnam và đăng ký sử dụng Phần mềm tra cứu văn bản.

Báo lỗi
  • Báo lỗi
  • Gửi liên kết tới Email
  • Chia sẻ:
  • Chế độ xem: Sáng | Tối
  • Thay đổi cỡ chữ:
    17
Ghi chú

Tiêu chuẩn Việt Nam TCVN 8685-27:2018

Tiêu chuẩn Quốc gia TCVN 8685-27:2018 Quy trình kiểm nghiệm vắc xin - Phần 27: Vắc xin nhược độc phòng bệnh viêm phế quản truyền nhiễm ở gà
Số hiệu:TCVN 8685-27:2018Loại văn bản:Tiêu chuẩn Việt Nam
Cơ quan ban hành: Bộ Khoa học và Công nghệLĩnh vực: Nông nghiệp-Lâm nghiệp
Ngày ban hành:06/09/2018Hiệu lực:
Đã biết

Vui lòng đăng nhập tài khoản để xem Ngày áp dụng. Nếu chưa có tài khoản Quý khách đăng ký tại đây!

Người ký:Tình trạng hiệu lực:
Đã biết

Vui lòng đăng nhập tài khoản gói Tiêu chuẩn hoặc Nâng cao để xem Tình trạng hiệu lực. Nếu chưa có tài khoản Quý khách đăng ký tại đây!

Tình trạng hiệu lực: Đã biết
Ghi chú
Ghi chú: Thêm ghi chú cá nhân cho văn bản bạn đang xem.
Hiệu lực: Đã biết
Tình trạng: Đã biết

TIÊU CHUN QUỐC GIA

TCVN 8685-27:2018

QUY TRÌNH KIỂM NGHIỆM VẮC XIN - PHẦN 27: VẮC XIN NHƯỢC ĐỘC PHÒNG BỆNH VIÊM PHẾ QUẢN TRUYỀN NHIỄM Ở GÀ

Vaccine testing procedure - Part 27: Infectious Bronchitis Vaccine, live

Lời nói đầu

TCVN 8685-27 : 2018 do Trung tâm Kiểm nghiệm thuốc Thú y TW1 - Cục Thú y biên soạn, Bộ Nông nghiệp và Phát triển nông thôn đề nghị, Tổng cục Tiêu chuẩn Đo lường Chất lượng thẩm định, Bộ Khoa học và Công nghệ công bố.

Bộ TCVN 8685 Quy trình kiểm nghiệm vắc xin gồm các phần:

- TCVN 8685-1 : 2011, Phần 1: Vắc xin phó thương hàn lợn nhược độc;

- TCVN 8685-2 : 2011, Phần 2: Vắc xin viêm gan siêu vi trùng vịt;

- TCVN 8685-3 : 2011, Phần 3: Vắc xin E.coli của ln;

- TCVN 8685-4 : 2011, Phần 4: Vắc xin vô hoạt phòng hội chứng giảm đ ;

- TCVN 8685-5 : 2011, Phn 5: Vắc xin ung khí thán;

- TCVN 8685-6 : 2011, Phần 6: Vắc xin Gumboro nhược độc;

- TCVN 8685-7 : 2011, Phần 7: Vắc xin nhiệt thán nha bào vô độc chủng 34 F2;

- TCVN 8685-8 : 2011, Phần 8: Vắc xin dịch tả lợn nhược độc;

- TCVN 8685-9 : 2014, Phần 9: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh Cúm gia cầm A/H5N1;

- TCVN 8685-10 : 2014, Phần 10: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh Lở mồm long móng (FMD);

- TCVN 8685-11 : 2014, Phần 11: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh Phù đầu gà (coryza);

- TCVN 8685-12 : 2014, Phần 12: Vắc xin nhược độc, đông khô phòng hội chứng rối loạn hô hấp và sinh sản ở lợn (PRRS);

- TCVN 8685-13 : 2014, Phn 13: Vắc xin vô hoạt phòng hội chứng rối loạn hô hấp và sinh sn ở lợn (PRRS);

- TCVN 8685-14 : 2017, Phần 14: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh viêm phổi thể kính ở lợn;

- TCVN 8685-15 : 2017, Phần 15: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh viêm phi do pasteurella multocida type D gây ra ở lợn;

- TCVN 8685-16 : 2017, Phần 16: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh viêm teo mũi truyền nhiễm lợn;

- TCVN 8685-17 : 2017, Phần 17: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh viêm màng phi lợn;

- TCVN 8685-18 : 2017, Phần 18: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh newcastle;

- TCVN 8685-19 : 2017, Phần 19: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh gumboro;

- TCVN 8685-20 : 2018, Phần 20: Vắc xin nhược độc phòng bệnh Newcastle;

- TCVN 8685-21 : 2018, Phần 21: Vắc xin phòng bệnh đậu gà;

- TCVN 8685-22 : 2018, Phần 22: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh tụ huyết trùng ở gia cầm;

- TCVN 8685-23 : 2018, Phần 23: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh Salmonella enteritidis ở gà;

- TCVN 8685-24 : 2018, Phần 24: Vắc xin vô hoạt phòng bệnh Salmonella typhimurium gà;

- TCVN 8685-25 : 2018, Phần 25: Vắc xin phòng bệnh giả dại ở lợn

- TCVN 8685-26 : 2018, Phần 26: Vắc xin nhược độc phòng bệnh viêm thanh khí qun truyền nhim ở gà;

- TCVN 8685-27 : 2018, Phần 27: Vắc xin nhược độc phòng bệnh viêm phế quản truyn nhiễm ở gà.

 

QUY TRÌNH KIM NGHIỆM VẮC XIN - PHN 27: VẮC XIN NHƯỢC ĐỘC PHÒNG BỆNH VIÊM PHẾ QUẢN TRUYN NHIỄM Ở GÀ

Vaccine testing procedure - Part 27: Infectious Bronchitis Vaccine, Live

1  Phạm vi áp dụng

Tiêu chuẩn này quy định về quy trình kiểm nghiệm Vắc xin nhược độc phòng bệnh Viêm phế quản truyền nhiễm (IB) do vi rút thuộc ging Coronavirus gây ra ở gà.

2  Tài liệu viện dẫn

Các tài liệu viện dẫn sau rt cần thiết cho việc áp dụng tiêu chuẩn này. Đối với các tài liệu viện dẫn ghi năm công bố thì áp dụng phiên bản được nêu. Đối với các tài liệu viện dẫn không ghi năm công bố thì áp dụng phiên bản mới nhất, bao gồm cả các sửa đổi, bổ sung (nếu có).

TCVN 8684:2011 Vắc xin và chế phẩm sinh học dùng trong thú y - Phép thử độ thuần khiết”

3  Ký hiệu và chữ viết tắt

IB

Infectious Bronchitis

IBV

Infectious Bronchitis Virus

EID50

50 % Egg Infective Dose

HA

Haemagglutination

HI

Haemagglutination Inhibition

ELISA

Enzyme-linked Immunosorbent Assay

4  Nguyên tắc

Vắc xin được kiểm tra các chỉ tiêu cảm quan, độ vô trùng bằng phương pháp phân tích trong phòng thử nghiệm và các chỉ tiêu an toàn, hiệu lực được đánh giá trên động vật thí nghiệm.

5  Vật liệu và thuốc thử

5.1  Gà 1 tuần tuổi, gà khỏe, âm tính với kháng thể kháng vi rút IB

5.2  Nước muối sinh lý đã được hấp tiệt trùng, nng độ 0,9 %

5.3  Gà trống khỏe, đã trưởng thành, âm tính với kháng thể kháng vi rút cúm và Newcastle

5.4  Kit phát hiện kháng th IBV

5.5  Dung dịch natri citrat 5 %

5.6  Trứng gà sạch có phôi từ 9 ngày tuổi đến 11 ngày tuổi

5.7  Kháng nguyên IB

6  Thiết bị, dụng cụ

Sử dụng các thiết bị, dụng cụ của phòng thí nghiệm thông thường và cụ thể như sau:

6.1  Micropipet đơn kênh, dung tích từ 0,5 μl đến 10 μl, từ 5 μl đến 50 μl, từ 50 μl đến 200 μl, từ 100 μl đến 1000 μl

6.2  Micropipet đa kênh, dung tích từ 5 μl đến 50 μl, từ 50 μl đến 200 μl

6.3  Đầu tip phù hợp với micropipet

6.4  Dao, kéo, panh kẹp vô trùng

6.5  Đĩa 96 giếng chữ U,V

6.6  Máy ly tâm, có thể quay với tốc độ từ 1000 rpm đến 3000 rpm

6.7  ng ly tâm vô trùng

6.8  Bơm tiêm 1 lần, dung tích 1 ml, 3 ml, 5 ml, 10 ml

6.9  Máy đọc ELISA cóc sóng từ 405 nm đến 650 nm

6.10  Tủ ấm duy trì nhiệt độ 37 °C

6.11  Cốc có m vô trùng

7  Cách tiến hành

7.1  Kiểm tra cảm quan

Quan sát bằng mắt thường, vắc xin đạt chỉ tiêu kiểm tra cm quan khi lọ kín, không rạn nứt, chế phẩm xốp, màu đng nhất, hòa tan hoàn toàn trong nước muối sinh lý (5.2) sau 2 min có lắc nhẹ.

7.2  Kim tra vô trùng

7.2.1  Kiểm tra tạp nhiễm vi khuẩn. Theo TCVN 8684 : 2011

7.2.2  Kiểm tra tạp nhiễm nấm mc. Theo TCVN 8684 : 2011

7.3  Kiểm tra tính an toàn

- Nh mắt mũi cho 10 gà (5.1), mỗi con 10 liều vắc xin ghi trên nhãn

- Theo dõi toàn bộ gà thí nghiệm trong 14 ngày

Vắc xin đạt chỉ tiêu kiểm tra tính an toàn nếu tất cả gà sống khỏe, phát triển bình thường và không có biểu hiện triệu chứng của bệnh IB như th khò khè, vươn c lên để thở, hắt hơi, kém ăn, xù lông.

7.4  Kiểm tra hiệu lực

Sử dụng 1 trong 3 phương pháp sau:

7.4.1  Phương pháp HI

- Sử dụng 30 gà (5.1), chia làm 2 nhóm:

+ Nhóm 1: nh mắt mũi cho 20 gà (5.1), mỗi con 1 liều vắc xin ghi trên nhãn

+ Nhóm 2: nhỏ nước muối sinh lý (5.2) vào mắt mũi cho 10 gà với liều lượng như gà nhóm 1

- Sau khi nhỏ vắc xin 28 ngày, tất c gà nhóm 1 và nhóm 2 được lấy máu, thu huyết thanh thực hiện phn ứng HI.

- Vắc xin đạt chỉ tiêu kiểm tra hiệu lực khi hiệu giá HI của gà nhóm 1 1 : 16; trong khi đó gà nhóm 2 âm tính (xem phụ lục A, B).

7.4.2  Phương pháp ELISA

- Sử dụng 30 gà (5.1), chia làm 2 nhóm:

+ Nhóm 1: nh mắt mũi cho 20 gà (5.1), mỗi con 1 liều vắc xin ghi trên nhãn

+ Nhóm 2: nhỏ nước muối sinh lý (5.2) vào mắt mũi cho 10 gà với liều lượng như gà nhóm 1

- Sau khi nhỏ vắc xin 28 ngày, tất cả gà nhóm 1 và nhóm 2 được lấy máu, thu huyết thanh thực hiện phản ứng ELISA.

- Vắc xin đạt chỉ tiêu kiểm tra hiệu lực khi ít nhất 80 % mẫu huyết thanh của gà nhóm 1 đạt giá trị dương tính; trong khi đó ít nhất 80 % mẫu huyết thanh của gà nhóm 2 đạt giá trị âm tính (tham kho phụ lục C).

7.4.3  Chuẩn độ hiệu giá vi rút

Vắc xin đạt chỉ tiêu kiểm tra hiệu lực khi mỗi liều vắc xin có hiệu giá vi rút 102 EID50 (xem phụ lục D)

8  Kết luận

Vắc xin đạt tiêu chuẩn kiểm nghiệm khi đạt các chỉ tiêu kiểm tra cảm quan, kiểm tra vô trùng, kiểm tra tính an toàn và kiểm tra hiệu lực.

 

Phụ lục A

(Quy định)

Phản ứng ngưng kết hồng cầu gà (HA)

A.1  Chuẩn bị hng cầu gà 1 %

A.1.1  Dùng bơm kim tiêm 1 lần (6.8) để hút 1 ml dung dịch natri citrat 5 % (5.5) cho vào ống ly tâm (6.7), thêm 9 ml máu ly từ gà trống (5.3).

A.1.2  Ly tâm ng (A.1.1) bằng máy ly tâm (6.6) với tốc độ từ 1000 rpm đến 1500 rpm trong 15 min, gạn b phần dung dịch nổi bên trên, thêm 10ml nước muối sinh lý (5.2) vào hng cầu, lắc đều. Ly tâm lặp lại từ 3 lần đến 4 lần bằng máy ly tâm (6.6) để rửa hng cầu, dùng micropipet (6.1) hút bỏ dung dịch ở trên sau lần ly tâm cuối.

A.1.3  Chuẩn bị dung dịch hng cầu gà 1% bằng cách dùng micropipet (6.1) chuyển 1 ml hng cầu (A.1.2) vào cốc có mỏ (6.11) có chứa 99 ml nước muối sinh lý (5.2).

A.1.4  Bảo quản dung dịch hng cầu 1% (A.1.3) ở nhiệt độ từ 4 °C đến 8 °C. Hng cầu sau khi pha có thể dùng trong 4 ngày đến 5 ngày (nếu dung dịch hng cầu b dung huyết thì loại b).

A.2  Cách tiến hành

A.2.1  Sử dụng micropipet (6.2) nh 50 μl nước muối sinh lý (5.2) vào đĩa 96 giếng chữ U (6.5) t giếng thứ 1 đến giếng 12.

A.2.2  Dùng micropipet (6.1) nhỏ 50 μl kháng nguyên IB (5.7) vào giếng 1.

A.2.3  Sử dụng micropipet (6.2) trộn đều kháng nguyên với nước muối sinh lý (5.2) ở giếng 1, hút 50 μl chuyn sang giếng 2 trộn đều, hút 50 μl chuyển sang giếng 3 trộn đều, tiếp tục làm như vậy đến giếng 11 rồi b đi 50 μl.

A.2.4  Giếng 12 làm đối chứng hng cầu: cho 50 μl nước muối sinh lý (5.2) và 50 μl hng cầu gà 1 % (A.1.3).

A.2.5  Sử dụng micropipet (6.2) nh 50 μl hng cầu gà 1 % (A.1.3) vào các giếng của đĩa phản ứng.

A.2.6  Lắc nhẹ bằng tay và ủ đĩa phản ứng ở nhiệt độ phòng trong 30 min, sau đó đọc kết qu.

A.3  Đọc kết quả

- Phản ứng âm tính: Hng cầu lắng xuống đáy tạo thành chấm tròn.

- Phn ứng dương tính: Xảy ra hiện tượng ngưng kết, hng cầu ngưng kết thành cụm lấm tấm xung quanh giếng.

- Đọc hiệu giá ngưng kết: Hiệu giá ngưng kết kháng nguyên được đánh giá ở độ pha loãng cao nhất còn có phản ứng ngưng kết xảy ra.

Sơ đồ thực hiện phản ứng HA

Các bước

Giếng nguyên liệu

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

Pha loãng kháng nguyên

Nước sinh lý (μl)

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

Kháng nguyên (μl)

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

0

Cho hng cầu

Hng cầu (μl)

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

Độ pha loãng kháng nguyên

1/2

1/4

1/8

1/16

1/32

1/64

1/128

1/256

1/512

1/1024

1/2048

Đối chứng hng cầu

 

Phụ lục B

(Quy định)

Phản ứng ngăn trở ngưng kết hồng cầu gà (HI)

B.1  Chuẩn độ kháng nguyên 4 đơn vị HA

B1.1  Kháng nguyên được pha 4 đơn vị HA cần phải chuẩn đ phn ứng HI cho kết quả chính xác. Ví dụ: HA bằng 1/256, 4HA bằng 1/64 (Pha 4HA: gồm 1 phần KN và 63 phần nước muối sinh lý (5.2)).

B1.2  Kiểm tra kháng nguyên 4HA đã pha: Tiến hành phn ứng HA (xem phụ lục A), nếu kết quả ngưng kết đến giếng thứ 2, như vậy kháng nguyên pha đạt. Nếu ngưng kết đến giếng thứ 3 (hoặc hơn) là kháng nguyên pha đặc. Nếu ngưng kết chỉ ở giếng đầu tiên là kháng nguyên pha loãng.

B.2  Cách tiến hành

B.2.1  Sử dụng micropipet (6.2) nhỏ 25 μl nước muối sinh lý (5.2) vào đĩa 96 giếng chữ U (6.5).

B.2.2  Dùng micropipet (6.1) nhỏ 25 μl huyết thanh cần kiểm tra vào giếng 1.

B.2.3  Pha loãng huyết thanh: Sử dụng micropipet (6.2) trộn đều huyết thanh với nước muối sinh (5.2) ở giếng 1, rồi hút 25 μl chuyển sang giếng 2 trộn đều, hút 25 μl chuyển sang giếng 3 trộn đều, tiếp tục làm như vậy đến giếng 11 rồi b đi 25μl.

B.2.4  Sử dụng micropipet (6.2) nhỏ 25 μl dung dịch kháng nguyên 4HA vào các giếng từ 1 đến 11. Lắc nhẹ, để 30 min ở nhiệt độ phòng.

B.2.5  Giếng 12 làm đối chứng hng cầu: 50 μl nước muối sinh lý (5.2) và 50 μl hng cầu gà 1 % (A.1.3).

B.2.6  Sử dụng micropipet (6.2) nh 50 μl hng cầu gà 1 % (A.1.3) vào các giếng của đĩa phản ứng.

B.2.7  Lắc nhẹ bằng tay hoặc bằng máy. đĩa phản ứng ở nhiệt độ phòng trong thời gian khoảng 30 min, sau đó đọc kết quả.

B.3  Đọc kết quả

- Phản ứng âm tính: Có hạt ngưng kết lấm chm.

- Phn ứng dương tính: Hng cầu lắng xuống đáy tạo chấm tròn.

Sơ đồ thực hiện phản ứng HI

Các bước

Giếng nguyên liệu

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

Pha loãng huyết thanh

Nước sinh lý (μl)

25

25

25

25

25

25

25

25

25

25

25

50

Huyết thanh (μl)

25

25

25

25

25

25

25

25

25

25

25

0

Cho kháng nguyên

4 HA Newcastle (μl)

25

25

25

25

25

25

25

25

25

25

25

0

Lắc nhẹ, để 30 min ở nhiệt độ phòng

Cho hng cầu

Hng cầu (μl)

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

50

Độ pha loãng huyết thanh

1/2

1/4

1/8

1/16

1/32

1/64

1/128

1/256

1/512

1/1024

1/2048

Đối chứng hng cầu

 

Phụ lục C

(Tham khảo)

Phản ứng ELISA (Enzyme-linked immunosorbent assay)

C.1  Vật liệu thử

C.1.1  Huyết thanh gà cần kiểm tra

C.1.2  Nước cất 2 lần

C.1.3  Kit phát hiện kháng thể IBV

VÍ DỤ: Dùng Kit ELISA của hãng IDEXX (Infectious Bronchitis Virus Antibody Test Kit - Cat. No. JL 181)1).

C.2  Cách tiến hành

C.2.1  Pha loãng huyết thanh (C.1.1) bằng dung dịch pha mẫu theo tỷ lệ 1/500.

C.2.2  Dùng micropipet (6.1) hút 100 μl đối chứng dương vào giếng A1 và A2 của đĩa có phủ kháng nguyên IB.

C.2.3  Dùng micropipet (6.1) hút 100 μl đối chứng âm vào giếng B1 và B2 của đĩa có phủ kháng nguyên IB.

C.2.4  Dùng micropipet (6.2) hút 100 μl huyết thanh đã pha loãng (C.2.1) vào các giếng còn lại (tgiếng A5 đến giếng H12) của đĩa có phủ kháng nguyên IB.

C.2.5   đĩa ở nhiệt độ phòng trong 30 min (nhiệt độ từ 18 °C đến 25 °C).

C.2.6  Loại b dung dịch trong đĩa, ra các giếng của đĩa bằng nước ct 2 lần (C.1.2), mỗi giếng 350 μl nước cất, rửa từ 3 ln đến 5 lần, sau khi rửa xong vỗ đĩa vào giấy thấm cho khô nước.

C.2.7  Dùng micropipet (6.2) cho Goat Anti-Chicken Horseradish Peroxidase Conjugate Solution vào tất cả các giếng của đĩa phản ứng, mỗi giếng 100 μl, sau đó ủ đĩa ở nhiệt độ phòng trong 30 min (nhiệt độ từ 18 °C đến 25 °C).

C.2.8  Loại bỏ dung dịch trong đĩa, rửa các giếng của đĩa bằng nước cất 2 lần (C.1.2), mỗi giếng 350 μl nước cất, rửa từ 3 lần đến 5 lần, sau khi rửa xong vỗ đĩa vào giấy thấm cho khô nước.

C.2.9  Dùng micropipet (6.2) cho Tetramethylbenzidine substrate vào tất c các giếng của đĩa phn ứng, mỗi giếng 100 μl, sau đó ủ đĩa ở nhiệt độ phòng trong 30 min (nhiệt độ từ 18 °C đến 25 °C).

C.2.10  Dùng micropipet (6.2) cho dung dịch dừng phản ứng vào tất cả các giếng của đĩa phản ứng, mỗi giếng 100 μl, sau đó đặt đĩa vào máy đọc ELISA (6.9) ở bước sóng 650 nm để ra các giá trị Optical Density (OD) của các mẫu trong đĩa phản ứng.

Sơ đồ vị trí mẫu trong đĩa ELISA

 

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

11

12

A

NC

NC

S7

S7

S15

S15

S23

S23

S31

S31

S39

S39

B

PC

PC

S8

S8

S16

S16

S24

S24

S32

S32

S40

S40

C

S1

S1

S9

S9

S17

S17

S25

S25

S33

S33

S41

S41

D

S2

S2

S10

S10

S18

S18

S26

S26

S34

S34

S42

S42

E

S3

S3

S11

S11

S19

S19

S27

S27

S35

S35

S43

S43

F

S4

S4

S12

S12

S20

S20

S28

S28

S36

S36

S44

S44

G

S5

S5

S13

S13

S21

S21

S29

S29

S37

S37

S45

S45

H

S6

S6

S14

S14

S22

S22

S30

S30

S38

S38

S46

S46

CHÚ THÍCH:

NC (negative control): đối chứng âm;

PC (positive control): đối chứng dương;

S (sample): mẫu.

C.3  Công thức tính kết quả

- Đối chng dương trung bình (PCx) =

OD giếng A1 + OD giếng A3

2

 

- Đối chng dương trung bình (NCx) =

OD giếng A2 + QD giếng A4

2

 

- Giá trị S/P =

OD Mu - NCx

PCx

- Hiệu giá S/P ( độ pha loãng 1 : 500): log10 Titer = 1,09 (log10S/P) + 3,36

C.4  Điều kiện kết quả

Giá tr OD của đối chứng đạt điều kiện như sau thì phản ứng đạt

- OD đối chứng dương - OD đối chứng âm > 0.075 (PCx - NCx > 0,075)

- OD đối chng âm 0,150 (NCx 0,150)

C.5  Diễn giải kết quả

- Giá trị S/P 0,20 mẫu kiểm tra âm tính (S/P 0,20 : N)

- Giá trị S/P > 0,20 mẫu kiểm tra dương tính (S/P > 0,20 : P)

 

Phụ lục D

(Quy định)

Chuẩn độ hiệu giá vi rút trong vắc xin

D.1  Vật liệu thử

- Vắc xin cn kiểm tra

- Trứng gà sạch (5.6)

- Nước muối sinh lý (5.2)

D.2  Cách tiến hành

D.2.1  Vắc xin được pha loãng với nước muối sinh lý (5.2) theo cơ số 10 thành các nng độ từ nng độ 10-1 đến nng độ 10-10

D.2.2  Tiêm huyễn dịch vắc xin đã pha loãng (D.2.1) vào xoang niệu mô ca trứng gà sạch (5.6), mỗi trứng tiêm 0,1 ml

D.2.3  Ấp các trứng đã được tiêm (D.2.2) ở tủ ấm (6.10) trong 7 ngày, hàng ngày soi trứng và loại bỏ trứng chết phôi trước 24 h

D.2.4  Sau 5 ngày theo dõi, trứng được mổ và kiểm tra bệnh tích đặc trưng của phôi trứng do vi rút IB gây ra (phôi chậm phát triển, cuộn tròn cùng với chứng suy nhược các bắp cơ và lắng đọng urate trong thận, nước xoang niệu mô trong), từ đó tính liều gây nhiễm của vi rút trong vắc xin cho 50 % phôi trứng (EID50) theo công thức Reed - Muench như sau:

LgEID50 = LgA + Xlgf

X =

Trong đó:

X: Khoảng cách tỷ lệ

A: Nng độ pha loãng vi rút gây nhiễm cho trứng cận trên 50 %

A: Tỷ lệ % trứng bị nhiễm cận trên 50 %

B: Tỷ lệ % trng bị nhiễm cận dưới 50 %

f: Cơ số pha loãng vi rút

 

Thư mục tài liệu tham khảo

[1] Asean standard requirements for Infectious Bronchitis Vaccine, Live

[2] OIE Terrestrial Manual 2012 - Chapter 2.3.2 Avian Infectious Bronchitis

[3] TCCS 09 VR -10KN1 - Quy trình Kiểm nghiệm vắc xin Viêm phế quản truyền nhiễm (IB) nhược độc

 

1) Thông tin này đưa ra tạo điều kiện thuận tiện cho người sử dụng tiêu chun và không ấn định sử dụng sản phẩm của nhà cung cp này. Có thể sử dụng các sn phẩm tương tự nếu cho các kết quả tương đương.

Click Tải về để xem toàn văn Tiêu chuẩn Việt Nam nói trên.

Để được giải đáp thắc mắc, vui lòng gọi

19006192

Theo dõi LuatVietnam trên YouTube

TẠI ĐÂY

văn bản cùng lĩnh vực

văn bản mới nhất

×
Vui lòng đợi